Introducción
La enfermedad de Chagas, también conocida como tripanosomiasis americana, es una enfermedad tropical desatendida y potencialmente mortal causada por el parásito protozoario Trypanosoma cruzi. Como se observa en el Cuadro 1, la propagación de la enfermedad de Chagas, considerada endémica en 21 países de América Latina, ha transcendido esta región debido a la migración de personas infectadas y a modos específicos de transmisión no vectorial, lo cual ha facilitado su expansión a países no endémicos de América y otras partes del mundo.
Cuadro 1
Impacto de la enfermedad de Chagas
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[i] *Argentina, Belice, Bolivia (Estado Plurinacional de), Brasil, Chile, Colombia, Costa Rica, Ecuador, El Salvador, Guayana Francesa, Guatemala, Guyana, Honduras, México, Nicaragua, Panamá, Paraguay, Perú, Surinam, Uruguay y Venezuela (República Bolivariana de).
[ii] ** Dirección General de Epidemiología (2022), Tripanosomiasis. SUIVE/DGE/Secretaría de Salud/Estados Unidos Mexicanos (2022).
[iii] Fuente: Información tomada de WHO (2024); DNDi (2024).
En la actualidad, se estiman infectadas en el mundo a más de entre 6 y 7 millones de personas, mientras 75 millones permanecen en riesgo de contraer la enfermedad. Cada año se reportan 30,000 nuevos casos y más de 12,000 muertes, subrayando su relevancia como una gran preocupación de salud pública a nivel global. Sin embargo, menos del 10% de los infectados han sido diagnosticados, lo cual dificulta su control y tratamiento oportuno.
En México, entre los estados con mayor incidencia se encuentran: Campeche, Chiapas, Guanajuato, Hidalgo, Jalisco, Michoacán, Nayarit, Nuevo León, Oaxaca, Quintana Roo, Tamaulipas, Veracruz y Yucatán, reflejando la distribución geográfica de los vectores transmisores en el país.
A pesar de los esfuerzos y avances importantes en el control de su transmisión, la enfermedad de Chagas se ha convertido en un problema de salud global (WHO, 2024; DNDi, 2024).
La enfermedad de Chagas fue descubierta en 1909, por el brasileño Carlos Ribeiro Justiniano Chagas, y fue reconocida por la Asamblea Mundial de la Salud hasta 2019, declarando el 14 de abril como su día conmemorativo. La Organización Mundial de la Salud (OMS) la describe como una “enfermedad silenciosa”, al progresar a lo largo de varios años, y a menudo de manera asintomática. Sin tratamiento, la enfermedad de Chagas puede provocar alteraciones cardíacas y digestivas pudiendo ser estas fatales.
Su principal modo de transmisión es través de la picadura de chinches de la familia Reduviidae y subfamilia Triatominae, comúnmente conocidas como “chinches besuconas”, que estén infectadas con el parásito. Además de la transmisión vectorial, la infección se puede adquirir por vía oral (mediante alimentos o bebidas contaminados), por transfusiones de sangre o trasplantes de órganos, y, verticalmente, de madres infectadas a sus descendientes (WHO, 2024; DNDi, 2024; OPS, 2024).
Ciclo de vida de Trypanosoma cruzi
El parásito tiene un ciclo de vida complejo y ocurre tanto en el vector insecto como en los hospederos mamíferos (Figura 1). En humanos, se presenta en dos formas principales: tripomastigote y amastigote. Los tripomastigotes, presentes en la sangre, poseen un flagelo, el cual les permite moverse, pero no se dividen en el torrente sanguíneo; su función principal es diseminar la infección. Al invadir células del hospedador, se transforman en amastigotes, formas intracelulares sin flagelo que se replican activamente, preferentemente en células de origen mesenquimal.
Figura 1
Ciclo de vida de Trypanosoma cruzi.
Fuente: Imagen tomada de CDC - DPDx - American Trypanosomiasis. Traducción de los editores.
En el vector insecto, los tripomastigotes ingeridos por la chinche reduviidae se transforman en epimastigotes, su forma replicativa en el intestino del vector. Luego, en la parte posterior del intestino, evolucionan a tripomastigotes metacíclicos, la forma infectiva para los mamíferos, la cual se libera en las heces del insecto. Cuando estas entran en contacto con la piel o membranas mucosas del hospedador, los tripomastigotes penetran en las células y reinician el ciclo al diferenciarse nuevamente en amastigotes replicativos, los cuales eventualmente regresan al torrente sanguíneo como tripomastigotes para continuar la propagación de la infección.
Manifestaciones clínicas y diagnóstico
La enfermedad de Chagas progresa en dos etapas clínicas: fase aguda y fase crónica (Tabla 1). La fase aguda, que dura de semanas a meses, puede ser asintomática o manifestarse con síntomas leves o no específicos como fatiga, fiebre, dolor de cabeza, dolor muscular, dificultad para respirar, ganglios inflamados, palidez, hinchazón y dolor abdominal o torácico. En algunos casos, aparecen manifestaciones características como el chagoma (lesión cutánea en el sitio de la picadura de la chinche) y el signo de Romaña (hinchazón violácea en un ojo, debido a la entrada del parásito por la conjuntiva ocular). En situaciones graves, la infección puede derivar en miocarditis y meningoencefalitis. Aunque la mortalidad en esta es baja (0.2-5%) y menos del 1-5% de los pacientes desarrolla síntomas graves, la infección suele resolverse espontáneamente. No obstante, sin tratamiento, la infección persiste en forma crónica.
Tabla 1
Fases de la enfermedad de Chagas.
[i] Fuente: Elaboración de los autores, con base en Pérez-Molina y Molina (2018), y DNDi (2024).
En la fase crónica, la mayoría de los individuos permanecen asintomáticos, en una condición conocida como fase indeterminada, la cual puede prolongarse durante años. Sin embargo, entre el 30 y 40% de pacientes desarrolla complicaciones severas entre 10 y 30 años después de la infección aguda, afectando principalmente al corazón (miocardiopatía, insuficiencia cardíaca, arritmias y riesgo de muerte súbita) y/o al sistema digestivo (megaesófago y megacolon). El diagnóstico en esta fase se basa en pruebas serológicas, electrocardiograma, ecocardiograma y PCR, aunque la sensibilidad de esta última disminuye en comparación con la fase aguda (Tabla 1). Además, los pacientes inmunocomprometidos presentan un mayor riesgo de desarrollar manifestaciones graves en esta etapa (Pérez-Molina y Molina 2018; DNDi, 2024).
El diagnóstico de la fase crónica requiere la concordancia de dos pruebas serológicas, siendo los métodos más utilizados ELISA (Chagatest recombinante, BioELISA Chagas Abbott Prism, MultiCruzi) y pruebas rápidas (Chagas Stat-Pak, Chagas Detect Plus, BIOLINE Chagas Ab). Aunque el uso de antígenos serológicos específicos de T. cruzi ha mejorado la detección de la enfermedad, se han identificado variaciones geográficas en la sensibilidad de las pruebas, lo que subraya la necesidad de mejorar en el diagnóstico congénito, la supervisión del tratamiento y los antígenos específicos de cepas (Bhattacharyya et al., 2024).
Tratamiento actual para la enfermedad de Chagas
Durante más de 60 años, solo se han utilizado dos fármacos para tratar la enfermedad de Chagas: nifurtimox y benznidazol, cuya eficacia varía según la fase de la enfermedad. Ambos son compuestos nitro-heterocíclicos que actúan como prodrogras, siendo convertidos en su forma activa por la enzima específica del parásito, nitrorreductasa tipo I (TcNTR I), el cual los transforma en intermediarios con actividad antiparasitaria y produciendo especies reactivas de oxígeno (Cárdenas-Guerra et al., 2022; Francisco et al., 2020).
Sin embargo, el uso de estos fármacos está limitado por la aparición de efectos adversos significativos, incluyendo manifestaciones cutáneas, digestivas, neurológicas y hematológicas en el caso del benznidazol, y trastornos digestivos, psiquiátricos y neurológicos para el nifurtimox (Tabla 2). Estos efectos adversos contribuyen a una alta tasa de abandono del tratamiento, lo cual afecta su eficacia terapéutica (De Sousa et al., 2024).
Tabla 2
Reacciones adversas de benznidazol y nifurtimox.
[i] Fuente: Elaboración de los autores, con base en De Sousa et al. (2024).
Los estudios clínicos han demostrado que estos fármacos son más efectivos cuando se administran en etapas tempranas de la infección y han mostrado cierto grado de eficacia en la fase crónica asintomática. No obstante, presentan tres limitaciones principales: i) tratamientos prolongados de 60 a 90 días; ii) efectos adversos severos, los cuales afectan la adherencia al tratamiento, y, iii) baja eficiencia en la etapa crónica con síntomas severos (DNDi, 2024).
Las limitaciones de los tratamientos actuales resaltan la necesidad de desarrollar nuevas herramientas terapéuticas que optimicen la eficacia y tolerabilidad del manejo de la enfermedad de Chagas.
Desafíos en el estudio de Trypanosoma cruzi
El estudio de T. cruzi a nivel biológico y molecular ha sido particularmente desafiante debido a su complejo genoma, las complicadas interacciones con el huésped durante la etapa crónica y la falta de herramientas eficaces para su manipulación genética. Además, T. cruzi, clasificada como especie única, presenta una gran diversidad genética, la cual se ha reconocido y clasificado a través del análisis enzimático y genético de diferentes cepas en ambientes domésticos y silvestres, lo que ha llevado a la identificación de siete grupos genéticos o unidades de tipificación discretas (DTU, por sus siglas en inglés), denominadas TcI-TcVI y TcBat, agrupando cepas con características genéticas y biológicas comunes de acuerdo a la relación con la distribución geográfica, patogénesis, características clínicas y la respuesta a terapia (Zingales et al., 2012; Bhattacharyya et al., 2024). Aunque se han observado diferencias en la infectividad, virulencia y susceptibilidad a los fármacos entre las distintas cepas del parásito en estudios de laboratorio y en modelos animales, ha sido difícil relacionar de manera concreta estas diferencias genéticas con las manifestaciones clínicas en los pacientes (Gabaldón-Figueira et al., 2023; Dumonteil et al., 2023).
La entrega de ácidos nucleicos, tales como los ARN de interferencia pequeños (siARN), microRNAs, RNA mensajero y oligonucleótidos antisentido (AONs), ha demostrado ser efectiva en el desarrollo de fármacos, terapias génicas y vacunas. Estas terapias, conocidas por su capacidad de atacar enfermedades a nivel genético, han ampliado las opciones de tratamiento y han sido aprobadas por la Administración de Alimentos y Medicamentos de Estados Unidos (FDA, por sus siglas en inglés) debido a su eficiencia y seguridad (Gupta et al., 2021).
A diferencia de otros parásitos como Trypanosoma brucei, T. cruzi carece de la maquinaria celular para procesar moléculas como siRNA (DaRocha et al. 2004). Por ello, una alternativa de entre los ácidos nucleicos para manipular la expresión genética de T. cruzi a nivel de traducción es el uso de AONs. Estos oligonucleótidos sintéticos de cadena sencilla, compuestos de 20-40 nucleótidos ADN o ARN, pueden ser diseñados para unirse a secuencias complementarias del mRNA del gen blanco mediante interacciones del tipo Watson-Crick. Al ingresar al parásito y unirse con su mRNA blanco, los AONs son reconocidos por ciertos factores celulares, los cuales inducen la degradación del mRNA, inhibiendo así la expresión de la proteína blanco. Esta estrategia destaca por su alta especificidad, permitiendo “silenciar” cualquier gen deseado con precisión, reduciendo así los efectos tóxicos inespecíficos (Kole et al., 2012).
Sistemas de entrega en Trypanosoma cruzi
En T. cruzi, los métodos de entrega de AONs u otro material genético se han realizado principalmente por electroporación y difusión pasiva a través de la membrana celular. A pesar del potencial terapéutico de los AONs, su aplicación en T. cruzi sigue siendo limitada, con pocos estudios disponibles (Araya et al., 2008; Hashimoto et al., 2014 y 2016; Málaga et al., 2001; Okura et al., 2005, Orrego et al., 2014; San Francisco et al., 2017; Arroyo-Olarte et al., 2020). Estos métodos presentan desventajas relativas a su baja eficiencia de entrega, y son poco prácticos para su uso en el parásito. La electroporación, en particular, causa una alta mortalidad celular, requiere mucho tiempo, necesita equipos costosos y especializados, y carece de viabilidad para futuros usos (DaRocha et al. 2004; Padmanabhan et al. 2014; Olmo et al. 2018).
Los enfoques nanotecnológicos representan los métodos químicos avanzados para la transfección. Diversos estudios han demostrado que las nanopartículas pueden transportar fármacos al interior de T. cruzi (Romero et al., 2010; Arias et al., 2015; de Freitas et al., 2022; Muraca et al., 2023). Entre estas, destacan las nanopartículas basadas en polímeros o lípidos catiónicos, como liposomas o polimerosomas, utilizadas para introducir fármacos de baja masa molecular, aunque no se han empleado para la entrega de ácidos nucleicos (Quijia-Quezada et al., 2019; Mengarda et al., 2023). Por ello, es esencial desarrollar vectores efectivos para la entrega de AONs en T. cruzi, con el fin de ampliar su aplicabilidad en herramientas avanzadas de manipulación genética.
Nanopartículas viromiméticas como sistemas de entrega
Desde el enfoque de la nanotecnología, los virus representan plataformas altamente eficientes para el diseño de terapias avanzadas, nanomedicinas, diagnósticos y nanomateriales funcionales, gracias a su notable capacidad de transferir genes, fármacos u otras biomoléculas hacia células blanco. Estas entidades, que en su mayoría oscilan entre 16 y 300 nanómetros de diámetro, aunque existen excepciones como los mimivirus, los cuales alcanzan hasta 1.5 µm (Mondrow et al., 2013), presentan una arquitectura organizada combinando ácidos nucleicos encapsulados por una cápside proteica. Esta estructura les confiere estabilidad frente a condiciones ambientales adversas y permite su ingreso al interior celular mediante estrategias como el escape endosomal y la translocación nuclear (Gao et al., 2021).
Inspiradas por esta eficacia natural, han surgido las nanopartículas viromiméticas (NPVM), sistemas bioinspirados imitando aspectos clave de la estructura y funcionalidad viral, pero sin contener material genético infeccioso. Estas nanopartículas buscan reproducir, de forma controlada y segura, los mecanismos que hacen de los virus vectores tan efectivos.
A diferencia de las partículas similares a virus (VLPs), las cuales derivan directamente de proteínas virales, las NPVM se construyen mediante bloques sintéticos o naturales (proteína, péptidos, polímeros, lípidos o nanomateriales inorgánicos) racionalmente diseñados para autoensamblarse en estructuras con geometrías virales, funcionalidad dirigida, y capacidad de respuesta a estímulos fisiológicos (Ni et al., 2016; Walls et al., 2020; Moreno-Gutiérrez et al., 2023). Esta aproximación permite combinar la eficiencia de los virus con la versatilidad y seguridad de los sistemas artificiales.
Diseño estructural y funcional de las NPVM
El diseño de NPVM se basa en replicar características clave de los virus como su morfología, su superficie organizada, su habilidad de encapsular ácidos nucleicos, dirigirse a células blanco y responder al entorno intracelular. Por ejemplo, se han desarrollado cápsides sintéticas con simetría icosaédrica utilizando proteínas diseñadas computacionalmente, las cuales imitan la organización jerárquica de los virus (Bale et al., 2016). También se han empleados péptidos auto-ensamblables inspirados en dominios de virus como el adenovirus o el virus del mosaico del tabaco para formar nanocápsides capaces de encapsular y liberar material genético (Hernández-García et al., 2014; Matsuura et al., 2010).
En cuanto a la superficies, se han diseñado partículas viromiméticas que emulan la topografía viral mediante la repetición simétrica de subunidades, lo cual favorece la interacción con receptores celulares y la activación inmunitaria (Niu et al., 2013). Algunas de estas nanopartículas han incorporado envolturas lipídicas o glicoproteínas para replicar los mecanismos de reconocimiento y evasión de virus como VIH o herpes (Zhang et al., 2015; Perrault y Shih, 2014).
Aplicaciones biomédicas de las nanopartículas viromiméticas
Las NPVM tiene múltiples aplicaciones en el área de medicina y biotecnología, entre las cuales destacan:
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Terapía génica y edición genética:
Las NPVM han demostrado ser vehículos eficaces para la entrega de ADN, ARN mensajero y oligonucleótidos terapéuticos. Gracias a su diseño modular, permiten proteger el material de la degradación, facilitar su liberación intracelular y dirigirlo al núcleo (Edwardson y Hilvert, 2019). Algunas plataformas han integrado señales de localización nuclear o dominios fusogénicos para emular rutas virales específicas (Yang et al., 2017). Asimismo, nanopartículas basadas en péptidos derivados del adenovirus han sido diseñadas para promover el escape endosomal y la translocación nuclear (Alonso-Valenteen et al., 2019).
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Nanovacunas y presentación antigénica:
Inspiradas en la capacidad de los virus para activar el sistema inmune, diversas NPVM han sido desarrolladas como plataformas vacunales. Al presentar antígenos en una forma ordenada y multivalente, estas partículas promueven respuestas humorales y celulares más potentes que los antígenos solubles (Kanekiyo et al. 2013; Walls et al. 2020). Un ejemplo destacado es el uso de nanopartículas de ferritina que presentan proteínas hemaglutininas del virus de la influenza, generando anticuerpos neutralizantes de amplio espectro (Kanekiyo et al., 2013).
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Terapias antitumorales y antimicrobianas:
Se han desarrollado NPVM capaces de cruzar la barrera hematoencefálica, liberar fármacos de forma controlada en el microambiente tumoral, o combinar efectos fototérmicos y quimioterapéuticos en una sola plataforma (Zhuang et al., 2021; Li et al., 2019). Por ejemplo, el sistema Vir-ZM@TD libera iones Zn y genera especies reactivas de oxígeno al degradarse por ATP, mejorando la terapia humoral (Zhao et al., 2022). También existen diseños inspirados en virus bacteriófagos, los cuales actúan como antimicrobianos selectivos contra bacterias resistentes, donde un diseño inspirado en SARS-CoV-2 ha demostrado actividad antimicrobiana contra bacterias resistentes, integrando mecanismos de disrupción de membrana y activación por luz (Ni et al., 2022).
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Modelos simplificados de virus para investigación básica:
Las NPVM también sirven como herramientas para estudiar procesos virales como el ensamblaje de cápsides, el empaquetamiento de genomas, o la liberación intracelular, en un contexto no infeccioso pero funcionalmente comparable (Butterfield et al., 2017; Terasaka et al., 2018).
Nanopartículas (C4BK12) usadas para la transfección en T. cruzi
Hernández-García diseñó un conjunto de proteínas modulares con la capacidad de imitar las propiedades fundamentales estructurales de las proteínas de la cápside del virus del mosaico del tabaco, mostrando un gran potencial aplicativo (Hernández-García et al., 2012 y 2014; Punter et al., 2016). Estas proteínas han sido nombradas como C4BK12, C4S2BK12, C4S10BK12. En estas denominaciones, C se refiere a un bloque que proporciona estabilidad coloidal, lo cual significa que otorga solubilidad y previene la formación de agregados, y su secuencia está derivada de la colágena. En el caso de B, indica el bloque de unión compuesto por 12 lisinas (K12). Finalmente, S representa el bloque de autoensamblaje. Estas nuevas proteínas viromiméticas tienen la capacidad de interaccionar con ácidos nucleicos y formar nanopartículas a través de un proceso de autoensamblado similar al de las proteínas de cápsides virales. Además, protegen a los ácidos nucleicos de la degradación en medios biológicos y provocan una respuesta inmune mínima, lo cual es ventajoso para su uso en terapias génicas, pues reduce el riesgo de efectos secundarios relacionados con la respuesta inmunitaria (Moreno-Gutiérrez et al., 2021). Gracias a su diseño modular y producción recombinante, es posible modificar las nanopartículas de estas proteínas para optimizar la transfección, la internalización y el direccionamiento específico a células, abriendo grandes posibilidades para desarrollar acarreadores genéticos programables y eficientes (Moreno-Gutiérrez et al., 2023).
Nuestro grupo de trabajo evaluó por primera vez el uso de una de las proteínas recombinantes viromiméticas (C4BK12) (Cárdenas-Guerra et al., 2020) para transfectar AONs en T. cruzi. La proteína C4BK12 se unió a AON dirigido al mRNA del receptor de IP3 (TcIP3R) (previamente caracterizado por Hashimoto et al., 2014). Las nanopartículas formadas fueron de 10-25 nm, notablemente estables en medios biológicos, liberando hasta un 25% de los AONs. Para evaluar la internalización, se emplearon los AONs marcados con el fluoróforo ATTO488, lo cual permitió visualizar mediante microscopía de fluorescencia la entrada eficiente de las nanopartículas en los epimastigotes de T. cruzi (Figura 2). Los ensayos de PCR en tiempo real corroboraron una disminución del 68% en la expresión del gen blanco, sin observarse efectos citotóxicos.
Figura 2
Nanopartículas viromiméticas para la entrega de AONs en T. cruzi.
A) Esquema representativo de la transfección en epimastigotes mediada por las nanopartículas. B) Imagen de la nanopartícula observada mediante microscopía de forma atómica; barra de escala, 100 nm. C) Imagen de la nanopartícula dentro del parásito mediante microscopía de fluorescencia. En la composición, el campo claro aparece en gris, el núcleo y cinetoplasto, en azul, y la nanopartícula con AONs fluorescente, en verde.
Fuente: Elaboración de los autores.
La capacidad de formar nanopartículas que sean estables bioquímicamente y que entreguen el material genético eficazmente y sin causar citotoxicidad al parásito hace de estas proteínas viromiméticas una opción prometedora para futuras investigaciones relacionadas con las funciones de los genes o de blancos terapéuticos en T. cruzi. Además, debido a su diseño modular y producción recombinante, estas proteínas representan una plataforma flexible permitiendo su modificación sencilla con la capacidad de conferirle características que permitan una mayor eficiencia de transfección a blancos específicos como T. cruzi.
Conclusión y perspectivas
El control de la enfermedad de Chagas continúa limitado por desafíos tanto clínicos como experimentales, yendo desde la falta de tratamientos eficaces en etapas crónicas hasta las barreras metodológicas para el estudio genético de T. cruzi. En este escenario, las NPVM no solo representan una innovación en el ámbito de la nanotecnología, sino ofrecen, también, nuevas herramientas para abordar interrogantes biológicos aún no resueltos en este parásito. Su diseño modular, inspirado en mecanismos virales, permite explorar rutas alternativas de entrega de material genético que antes eran inaccesibles, abriendo posibilidades en modelos donde la transfección convencional resulta ineficiente o inviable. Más allá de sus aplicaciones actuales, las NPVM se proyectan como una plataforma adaptable, capaz de integrarse a nuevas estrategias de diagnóstico, terapéuticas o de investigación básica en contextos de parásitos complejos. En consecuencia, su incorporación en el estudio de T. cruzi no solo aporta soluciones técnicas, sino que redefine los marcos posibles para investigar y enfrentar enfermedades desatendidas desde una perspectiva multidisciplinaria e innovadora.
Referencias
Alonso-Valenteen, F., S. Pacheco, D. Srinivas, A. Rentsendorj, D. Chu, J. Lubow, J. Sims, T. Miao, S. Mikhael, J. Y. Hwang, R. Abrol y L. K. Medina Kauwe. (2019). HER3-targeted protein chimera forms endosomolytic capsomeres and self-assembles into stealth nucleocapsids for systemic tumor homing of RNA interference in vivo. Nucleic Acids Res, 47(21): 11020-11043. https://doi.org/10.1093/nar/gkz900.
F. Alonso-Valenteen S. Pacheco D. Srinivas A. Rentsendorj D. Chu J. Lubow J. Sims T. Miao S. Mikhael J. Y. Hwang R. Abrol L. K. Medina Kauwe 2019HER3-targeted protein chimera forms endosomolytic capsomeres and self-assembles into stealth nucleocapsids for systemic tumor homing of RNA interference in vivoNucleic Acids Res4721110201104310.1093/nar/gkz900
Araya, J. E., A. Cornejo, P. R. Orrego, E. M. Cordero, M. Cortéz, H. Olivares, I. Neira, H. Sagua, J. F. da Silveira, N. Yoshida y J. González. (2008). Calcineurin B of the human protozoan parasite Trypanosoma cruzi is involved in cell invasion. Microbes Infect, 10(8): 892-900. https://doi.org/10.1016/j.micinf.2008.05.003.
J. E. Araya A. Cornejo P. R. Orrego E. M. Cordero M. Cortéz H. Olivares I. Neira H. Sagua J. F. da Silveira N. Yoshida J. González 2008Calcineurin B of the human protozoan parasite Trypanosoma cruzi is involved in cell invasionMicrobes Infect10889290010.1016/j.micinf.2008.05.003
Arias, J. L., J. D. Unciti-Broceta, J. Maceira, T. del Castillo, J. Hernández-Quero, S. Magez, M. Soriano y J. A. García-Salcedo. (2015). Nanobody conjugated PLGA nanoparticles for active targeting of African trypanosomiasis. J Control Release, 197: 190-8. https://doi.org/10.1016/j.jconrel.2014.11.002.
J. L. Arias J. D. Unciti-Broceta J. Maceira T. del Castillo J. Hernández-Quero S. Magez M. Soriano J. A. García-Salcedo 2015Nanobody conjugated PLGA nanoparticles for active targeting of African trypanosomiasisJ Control Release19719019810.1016/j.jconrel.2014.11.002
Arroyo-Olarte, Rubén D., Ignacio Martínez, Eduardo Luján, Fela Mendlovic, Tzvetanka Dinkova y Bertha Espinoza. (2020). Differential gene expression of virulence factors modulates infectivity of TcI Trypanosoma cruzi strains. Parasitology Research, 119(11): 3803-3815. https://doi.org/10.1007/s00436-020-06891-1.
Rubén D. Arroyo-Olarte Ignacio Martínez Eduardo Luján Fela Mendlovic Tzvetanka Dinkova Bertha Espinoza 2020Differential gene expression of virulence factors modulates infectivity of TcI Trypanosoma cruzi strainsParasitology Research119113803381510.1007/s00436-020-06891-1
Bale, Jacob B., Shane Gonen, Yuxi Liu, William Sheffler, Daniel Ellis, Chantz Thomas, Duilio Cascio, Todd O. Yeates, Tamir Gonen, Neil P. King y David Baker. (2016). Accurate design of megadalton-scale two-component icosahedral protein complexes. Science, 353(6297): 389-394. https://doi.org/doi:10.1126/science.aaf8818.
Jacob B. Bale Shane Gonen Yuxi Liu William Sheffler Daniel Ellis Chantz Thomas Duilio Cascio O. Yeates Todd Tamir Gonen P. King Neil David Baker 2016Accurate design of megadalton-scale two-component icosahedral protein complexesScience353629738939410.1126/science.aaf8818
Bhattacharyya, T., N. Murphy y M. A. Miles. (2024). Diversity of Chagas disease diagnostic antigens: successes and limitations. PLoS Negl Trop Dis, 18(10): e0012512. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0012512.
T. Bhattacharyya N. Murphy M. A. Miles 2024Diversity of Chagas disease diagnostic antigens: successes and limitationsPLoS Negl Trop Dis1810e001251210.1371/journal.pntd.0012512
Butterfield, G. L., M. J. Lajoie, H. H. Gustafson, D. L. Sellers, U. Nattermann, D. Ellis, J. B. Bale, S. Ke, G. H. Lenz, A. Yehdego, R. Ravichandran, S. H. Pun, N. P. King y D. Baker. (2017). Evolution of a designed protein assembly encapsulating its own RNA genome. Nature, 552(7685): 415-420. https://doi.org/10.1038/nature25157.
G. L. Butterfield M. J. Lajoie H. H. Gustafson D. L. Sellers U. Nattermann D. Ellis J. B. Bale S. Ke G. H. Lenz A. Yehdego R. Ravichandran S. H. Pun N. P. King D. Baker 2017Evolution of a designed protein assembly encapsulating its own RNA genomeNature552768541542010.1038/nature25157
Cárdenas-Guerra, R. E., Martínez, I. y Espinoza, B. (2022). Papel de la enzima nitroreductasa tipo I de Trypanosoma cruzi en el metabolismo de fármacos anti-chagásicos. Revista Mexicana de Industria y Salud, 2(15): 36-42. ISSN: 2594-1445.
R. E. Cárdenas-Guerra I. Martínez B. Espinoza 2022Papel de la enzima nitroreductasa tipo I de Trypanosoma cruzi en el metabolismo de fármacos anti-chagásicosRevista Mexicana de Industria y Salud21536422594-1445
Cárdenas-Guerra, R. E. , D. S. Moreno-Gutiérrez, O. J. Vargas-Dorantes, B. Espinoza y A. Hernández-García. (2020). Delivery of antisense DNA into pathogenic parasite Trypanosoma cruzi using virus-like protein-based nanoparticles. Nucleic Acid Ther, 30(6): 392-401. https://doi.org/10.1089/nat.2020.0870.
R. E. Cárdenas-Guerra D. S. Moreno-Gutiérrez O. J. Vargas-Dorantes B. Espinoza A. Hernández-García 2020Delivery of antisense DNA into pathogenic parasite Trypanosoma cruzi using virus-like protein-based nanoparticlesNucleic Acid Ther30639240110.1089/nat.2020.0870
CDC-DPDx-American Trypanosomiasis. https://www.cdc.gov/dpdx/trypanosomiasisamerican/index.html.
CDC-DPDx-American Trypanosomiasishttps://www.cdc.gov/dpdx/trypanosomiasisamerican/index.html
DaRocha, W. D., K. Otsu, S. M. Teixeira y J. E. Donelson. (2004). Tests of cytoplasmic RNA interference (RNAi) and construction of a tetracycline-inducible T7 promoter system in Trypanosoma cruzi. Mol Biochem Parasitol, 133(2): 175-86. https://doi.org/10.1016/j.molbiopara.2003.10.005.
W. D. DaRocha K. Otsu S. M. Teixeira J. E. Donelson 2004Tests of cytoplasmic RNA interference (RNAi) and construction of a tetracycline-inducible T7 promoter system in Trypanosoma cruziMol Biochem Parasitol133217518610.1016/j.molbiopara.2003.10.005
De Freitas Oliveira, J. W., M. F. A. da Silva, I. Z. Damasceno, H. A. O. Rocha, A. A. da Silva Júnior y M. S. Silva. (2022). In vitro validation of antiparasitic activity of PLA-nanoparticles of sodium diethyldithiocarbamate against Trypanosoma cruzi. Pharmaceutics, 14(3). https://doi.org/10.3390/pharmaceutics14030497.
J. W. De Freitas Oliveira M. F. A. da Silva I. Z. Damasceno H. A. O. Rocha A. A. da Silva Júnior M. S. Silva 2022In vitro validation of antiparasitic activity of PLA-nanoparticles of sodium diethyldithiocarbamate against Trypanosoma cruziPharmaceutics14310.3390/pharmaceutics14030497
De Sousa, A. S., D. Vermeij, A. N. Ramos, Jr. y A. O. Luquetti. (2024). Chagas disease. Lancet, 403(10422): 203-218. https://doi.org/10.1016/s0140-6736(23)01787-7.
A. S De Sousa D. Vermeij A. N. Ramos Jr. A. O. Luquetti 2024Chagas diseaseLancet4031042220321810.1016/s0140-6736(23)01787-7
Dirección General de Epidemiología. (2022). Tripanosomiasis. SUIVE/DGE/Secretaría de Salud/Estados Unidos Mexicanos 2022. https://epidemiologia.salud.gob.mx/anuario/html/incidencia_enfermedad.html.
Dirección General de Epidemiología 2022TripanosomiasisSUIVEDGESecretaría de SaludEstados Unidos Mexicanos2022https://epidemiologia.salud.gob.mx/anuario/html/incidencia_enfermedad.html
DNDi. (2024). Symptoms, transmission, and current treatments for Chagas disease |DNDi https://dndi.org/diseases/chagas/facts/.
DNDi 2024Symptoms, transmission, and current treatments for Chagas diseaseDNDihttps://dndi.org/diseases/chagas/facts/
Dumonteil, E., H. Desale, W. Tu, N. Hernández-Cuevas, M. Shroyer, K. Goff, P. A. Marx y C. Herrera. (2023). Intra-host Trypanosoma cruzi strain dynamics shape disease progression: the missing link in Chagas disease pathogenesis. Microbiol Spectr, 11(5): e0423622. https://doi.org/10.1128/spectrum.04236-22.
E. Dumonteil H. Desale W. Tu N. Hernández-Cuevas M. Shroyer K. Goff P. A. Marx C. Herrera 2023Intra-host Trypanosoma cruzi strain dynamics shape disease progression: the missing link in Chagas disease pathogenesisMicrobiol Spectr115e042362210.1128/spectrum.04236-22
Edwardson, T. G. W. y D. Hilvert. (2019). Virus-inspired function in engineered protein cages. J Am Chem Soc, 141(24): 9432-9443. https://doi.org/10.1021/jacs.9b03705.
T. G. W Edwardson D. Hilvert 2019Virus-inspired function in engineered protein cagesJ Am Chem Soc141249432944310.1021/jacs.9b03705
Francisco, A. F., S. Jayawardhana, F. Olmo, M. D. Lewis, S. R. Wilkinson, M. C. Taylor y J. M. Kelly. (2020). Challenges in Chagas disease drug development. Molecules, 25(12). https://doi.org/10.3390/molecules25122799.
A. F. Francisco S. Jayawardhana F. Olmo M. D. Lewis S. R. Wilkinson M. C. Taylor J. M. Kelly 2020Challenges in Chagas disease drug developmentMolecules251210.3390/molecules25122799
Gabaldón-Figueira, J. C., N. Martínez-Peinado, E. Escabia, A. Ros-Lucas, E. Chatelain, I. Scandale, J. Gascon, M. J. Pinazo y J. Alonso-Padilla. (2023). State-of-the-art in the drug discovery pathway for Chagas disease: a framework for drug development and target validation. Res Rep Trop Med, 14: 1-19. https://doi.org/10.2147/rrtm.S415273.
J. C. Gabaldón-Figueira N. Martínez-Peinado E. Escabia A. Ros-Lucas E. Chatelain I. Scandale J. Gascon M. J. Pinazo J. Alonso-Padilla 2023State-of-the-art in the drug discovery pathway for Chagas disease: a framework for drug development and target validationRes Rep Trop Med1411910.2147/rrtm.S415273
Gao, X., J. Ding, Q. Long y C. Zhan. (2021). Virus-mimetic systems for cancer diagnosis and therapy. Wiley Interdiscip Rev Nanomed Nanobiotechnol, 13(3): e1692. https://doi.org/10.1002/wnan.1692.
X. Gao J. Ding Q. Long C. Zhan 2021Virus-mimetic systems for cancer diagnosis and therapyWiley Interdiscip Rev Nanomed Nanobiotechnol133e169210.1002/wnan.1692
Gupta, A., J. L. Andresen, R. S. Manan y R. Langer. (2021). Nucleic acid delivery for therapeutic applications. Adv Drug Deliv Rev, 178: 113834. https://doi.org/10.1016/j.addr.2021.113834.
A. Gupta J. L. Andresen R. S. Manan R. Langer 2021Nucleic acid delivery for therapeutic applicationsAdv Drug Deliv Rev17811383410.1016/j.addr.2021.113834
Hashimoto, M., M. Doi, N. Kurebayashi, K. Furukawa, H. Hirawake-Mogi, Y. Ohmiya, T. Sakurai, T. Mita, K. Mikoshiba y T. Nara. (2016). Inositol 1,4,5-trisphosphate receptor determines intracellular Ca(2+) concentration in Trypanosoma cruzi throughout its life cycle. FEBS Open Bio, 6(12): 1178-1185. https://doi.org/10.1002/2211-5463.12126.
M. Hashimoto M. Doi N. Kurebayashi K. Furukawa H. Hirawake-Mogi Y. Ohmiya T. Sakurai T. Mita K. Mikoshiba T. Nara 2016Inositol 1,4,5-trisphosphate receptor determines intracellular Ca(2+) concentration in Trypanosoma cruzi throughout its life cycleFEBS Open Bio6121178118510.1002/2211-5463.12126
Hashimoto, M. , T. Nara, H. Hirawake, J. Morales, M. Enomoto y K. Mikoshiba. (2014). Antisense oligonucleotides targeting parasite inositol 1,4,5-trisphosphate receptor inhibits mammalian host cell invasion by Trypanosoma cruzi. Sci Rep, 4: 4231. https://doi.org/10.1038/srep04231.
M. Hashimoto T. Nara H. Hirawake J. Morales M. Enomoto K. Mikoshiba 2014Antisense oligonucleotides targeting parasite inositol 1,4,5-trisphosphate receptor inhibits mammalian host cell invasion by Trypanosoma cruziSci Rep4423110.1038/srep04231
Hernández-García, A., D. J. Kraft, A. F. Janssen, P. H. Bomans, N. A. Sommerdijk, D. M. Thies-Weesie, M. E. Favretto, R. Brock, F. A. de Wolf, M. W. Werten, P. van der Schoot, M. C. Stuart y R. de Vries. (2014). Design and self-assembly of simple coat proteins for artificial viruses. Nat Nanotechnol, 9(9): 698-702. https://doi.org/10.1038/nnano.2014.169.
A. Hernández-García D. J. Kraft A. F. Janssen P. H. Bomans N. A. Sommerdijk D. M. Thies-Weesie M. E. Favretto R. Brock F. A. de Wolf M. W. Werten P. van der Schoot M. C. Stuart R. de Vries 2014Design and self-assembly of simple coat proteins for artificial virusesNat Nanotechnol9969870210.1038/nnano.2014.169
Hernández-García, A. , M. W. Werten, M. C. Stuart, F. A. de Wolf y R. de Vries. (2012). Coating of single DNA molecules by genetically engineered protein diblock copolymers. Small, 8(22): 3491-501. https://doi.org/10.1002/smll.201200939.
A. Hernández-García M. W. Werten M. C. Stuart F. A. de Wolf R. de Vries 2012Coating of single DNA molecules by genetically engineered protein diblock copolymersSmall8223491350110.1002/smll.201200939
Kanekiyo, M., C. J. Wei, H. M. Yassine, P. M. McTamney, J. C. Boyington, J. R. Whittle, S. S. Rao, W. P. Kong, L. Wang y G. J. Nabel. (2013). Self-assembling influenza nanoparticle vaccines elicit broadly neutralizing H1N1 antibodies. Nature, 499(7456): 102-6. https://doi.org/10.1038/nature12202.
M. Kanekiyo C. J. Wei H. M. Yassine P. M. McTamney J. C. Boyington J. R. Whittle S. S. Rao W. P. Kong L. Wang G. J. Nabel 2013Self-assembling influenza nanoparticle vaccines elicit broadly neutralizing H1N1 antibodiesNature499745610210610.1038/nature12202
Kole, R., A. R. Krainer y S. Altman. (2012). RNA therapeutics: beyond RNA interference and antisense oligonucleotides. Nat Rev Drug Discov, 11(2): 125-40. https://doi.org/10.1038/nrd3625.
R. Kole A. R. Krainer S. Altman 2012RNA therapeutics: beyond RNA interference and antisense oligonucleotidesNat Rev Drug Discov11212514010.1038/nrd3625
Li, Yang, Jinyan Lin, Peiyuan Wang, Qiang Luo, Huirong Lin, Yun Zhang, Zhenqing Hou, Jingfeng Liu y Xiaolong Liu. (2019). Tumor microenvironment responsive shape-reversal self-targeting virus-inspired nanodrug for imaging-guided near-infrared-II photothermal chemotherapy. ACS Nano, 13(11): 12912-12928. https://doi.org/10.1021/acsnano.9b05425.
Yang Li Jinyan Lin Peiyuan Wang Qiang Luo Huirong Lin Yun Zhang Zhenqing Hou Jingfeng Liu Xiaolong Liu 2019Tumor microenvironment responsive shape-reversal self-targeting virus-inspired nanodrug for imaging-guided near-infrared-II photothermal chemotherapyACS Nano1311129121292810.1021/acsnano.9b05425
Málaga, S. y N. Yoshida. (2001). Targeted reduction in expression of Trypanosoma cruzi surface glycoprotein gp90 increases parasite infectivity. Infect Immun, 69(1): 353-9. https://doi.org/10.1128/iai.69.1.353-359.2001.
S. Málaga N. Yoshida 2001Targeted reduction in expression of Trypanosoma cruzi surface glycoprotein gp90 increases parasite infectivityInfect Immun69135335910.1128/iai.69.1.353-359.2001
Matsuura, Kazunori, Kenta Watanabe, Tsubasa Matsuzaki, Kazuo Sakurai y Nobuo Kimizuka. (2010). Self-assembled synthetic viral capsids from a 24-mer viral peptide fragment. Angew Chem Int Ed, 49(50): 9662-9665. https://doi.org/10.1002/anie.201004606.
Kazunori Matsuura Kenta Watanabe Tsubasa Matsuzaki Kazuo Sakurai Nobuo Kimizuka 2010Self-assembled synthetic viral capsids from a 24-mer viral peptide fragmentAngew Chem Int Ed49509662966510.1002/anie.201004606
Mengarda, A. C., B. Iles, J. P. F. Longo y J. de Moraes. (2023). Recent approaches in nanocarrier-based therapies for neglected tropical diseases. Wiley Interdiscip Rev Nanomed Nanobiotechnol, 15(2): e1852. https://doi.org/10.1002/wnan.1852.
A. C. Mengarda B. Iles J. P. F. Longo J. de Moraes 2023Recent approaches in nanocarrier-based therapies for neglected tropical diseasesWiley Interdiscip Rev Nanomed Nanobiotechnol152e185210.1002/wnan.1852
Modrow, S., D. Falke, U. Truyen y H. Schätzl. (2013). Viruses: definition, structure, classification. En Molecular virology, 17-30. https:/doi.org/10.1007/978-3-642-20718-1_2.
S. Modrow D. Falke U. Truyen H. Schätzl 2013Viruses: definition, structure, classificationMolecular virology173010.1007/978-3-642-20718-1_2
Moreno-Gutiérrez, D. S., X. Del Toro-Ríos, N. J. Martínez-Sulvaran, M. B. Pérez-Altamirano y A. Hernéndez-García. (2023). Programming the cellular uptake of protein-based viromimetic nanoparticles for enhanced delivery. Biomacro-molecules, 24(4): 1563-1573. https://doi.org/10.1021/acs.biomac.2c01295.
D. S. Moreno-Gutiérrez X. Del Toro-Ríos N. J. Martínez-Sulvaran M. B. Pérez-Altamirano A. Hernéndez-García 2023Programming the cellular uptake of protein-based viromimetic nanoparticles for enhanced deliveryBiomacro-molecules2441563157310.1021/acs.biomac.2c01295
Moreno-Gutiérrez, D. S. , J. Zepeda-Cervantes, L. Vaca y A. Hernéndez-García. (2021). An artificial virus-like triblock protein shows low in vivo humoral immune response and high stability. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl, 129: 112348. https://doi.org/10.1016/j.msec.2021.112348.
D. S. Moreno-Gutiérrez J. Zepeda-Cervantes L. Vaca A. Hernéndez-García 2021An artificial virus-like triblock protein shows low in vivo humoral immune response and high stabilityMater Sci Eng C Mater Biol Appl12911234810.1016/j.msec.2021.112348
Muraca, G., M. E. Ruiz, R. C. Gambaro, S. Scioli-Montoto, M. L. Sbaraglini, G. Padula, J. S. Cisneros, C. Y. Chain, V. A. Álvarez, C. Huck-Iriart, G. R. Castro, M. B. Piñero, M. I. Marchetto, C. Alba Soto, G. A. Islan y A. Talevi. (2023). Nanostructured lipid carriers containing benznidazole: physicochemical, biopharmaceutical and cellular in vitro studies. Beilstein J Nanotechnol, 14: 804-818. https://doi.org/10.3762/bjnano.14.66.
G. Muraca M. E. Ruiz R. C. Gambaro S. Scioli-Montoto M. L. Sbaraglini G. Padula J. S. Cisneros C. Y. Chain V. A. Álvarez C. Huck-Iriart G. R. Castro M. B. Piñero M. I. Marchetto C. Alba Soto G. A. Islan A. Talevi 2023Nanostructured lipid carriers containing benznidazole: physicochemical, biopharmaceutical and cellular in vitro studiesBeilstein J Nanotechnol1480481810.3762/bjnano.14.66
Ni, R., J. Zhou, N. Hossain y Y. Chau. (2016). Virus-inspired nucleic acid delivery system: linking virus and viral mimicry. Adv Drug Deliv Rev, 106(Pt A): 3-26. https://doi.org/10.1016/j.addr.2016.07.005.
R. Ni J. Zhou N. Hossain Y. Chau 2016Virus-inspired nucleic acid delivery system: linking virus and viral mimicryAdv Drug Deliv Rev106A32610.1016/j.addr.2016.07.005
Ni, Y., J. Wang, M. Wang, L. Liu, H. Nie, Q. Wang, J. Sun, T. Yue, M. Q. Zhu y J. Wang. (2022). COVID-19-inspired “artificial virus” to combat drug-resistant bacteria by membrane-intercalation- photothermal-photodynamic multistage effects. Chem Eng J, 446: 137322. https://doi.org/10.1016/j.cej.2022.137322.
Y. Ni J. Wang M. Wang L. Liu H. Nie Q. Wang J. Sun T. Yue M. Q. Zhu J. Wang 2022COVID-19-inspired “artificial virus” to combat drug-resistant bacteria by membrane-intercalation- photothermal-photodynamic multistage effectsChem Eng J44613732210.1016/j.cej.2022.137322
Niu, Y., M. Yu, S. B. Hartono, J. Yang, H. Xu, H. Zhang, J. Zhang, J. Zou, A. Dexter, W. Gu y C. Yu. (2013). Nanoparticles mimicking viral surface topography for enhanced cellular delivery. Adv Mater, 25(43): 6233-7. https://doi.org/10.1002/adma.201302737.
Y. Niu M. Yu S. B. Hartono J. Yang H. Xu H. Zhang J. Zhang J. Zou A. Dexter W. Gu C. Yu 2013Nanoparticles mimicking viral surface topography for enhanced cellular deliveryAdv Mater25436233623710.1002/adma.201302737
Okura, M., J. Fang, M. L. Salto, R. S. Singer, R. Docampo y S. N. Moreno. (2005). A lipid-modified phosphoinositide-specific phospholipase C (TcPI-PLC) is involved in differentiation of trypomastigotes to amastigotes of Trypanosoma cruzi. J Biol Chem, 280(16): 16235-43. https://doi.org/10.1074/jbc.M414535200.
M. Okura J. Fang M. L. Salto R. S. Singer R. Docampo S. N. Moreno 2005A lipid-modified phosphoinositide-specific phospholipase C (TcPI-PLC) is involved in differentiation of trypomastigotes to amastigotes of Trypanosoma cruziJ Biol Chem28016162351624310.1074/jbc.M414535200
Olmo, F., F. C. Costa, G. S. Mann, M. C. Taylor y J. M. Kelly. (2018). Optimising genetic transformation of Trypanosoma cruzi using hydroxyurea-induced cell-cycle synchronisation. Mol Biochem Parasitol, 226: 34-36. https://doi.org/10.1016/j.molbiopara.2018.07.002.
F. Olmo F. C. Costa G. S. Mann M. C. Taylor J. M. Kelly 2018Optimising genetic transformation of Trypanosoma cruzi using hydroxyurea-induced cell-cycle synchronisationMol Biochem Parasitol226343610.1016/j.molbiopara.2018.07.002
OPS. (2024). Enfermedad de Chagas - OPS/OMS | Organización Panamericana de la Salud (paho.org). https://www.paho.org/es/temas/enfermedad-chagas.
OPS 2024Enfermedad de Chagas - OPS/OMS | Organización Panamericana de la Salud (paho.org)https://www.paho.org/es/temas/enfermedad-chagas
Orrego, P. R., H. Olivares, E. M. Cordero, A. Bressan, M. Cortez, H. Sagua, I. Neira, J. González, J. F. da Silveira, N. Yoshida y J. E. Araya. (2014). A cytoplasmic new catalytic subunit of calcineurin in Trypanosoma cruzi and its molecular and functional characterization. PLoS Negl Trop Dis, 8(1): e2676. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0002676.
P. R. Orrego H. Olivares E. M. Cordero A. Bressan M. Cortez H. Sagua I. Neira J. González J. F. da Silveira N. Yoshida J. E. Araya 2014A cytoplasmic new catalytic subunit of calcineurin in Trypanosoma cruzi and its molecular and functional characterizationPLoS Negl Trop Dis81e267610.1371/journal.pntd.0002676
Padmanabhan, P. K., R. B. Polidoro, N. S. Barteneva, R. T. Gazzinelli y B. A. Burleigh. (2014). Transient transfection and expression of foreign and endogenous genes in the intracellular stages of Trypanosoma cruzi. Mol Biochem Parasitol, 198(2): 100-3. https://doi.org/10.1016/j.molbiopara.2015.02.001.
P. K. Padmanabhan R. B. Polidoro N. S. Barteneva R. T. Gazzinelli B. A. Burleigh 2014Transient transfection and expression of foreign and endogenous genes in the intracellular stages of Trypanosoma cruziMol Biochem Parasitol198210010310.1016/j.molbiopara.2015.02.001
Pérez-Molina, J. A. e I. Molina. (2018). Chagas disease. Lancet, 391(10115): 82-94. https://doi.org/10.1016/s0140-6736(17)31612-4.
J. A. Pérez-Molina I. Molina 2018Chagas diseaseLancet39110115829410.1016/s0140-6736(17)31612-4
Perrault, S. D. y W. M. Shih. (2014). Virus-inspired membrane encapsulation of DNA nanostructures to achieve in vivo stability. ACS Nano, 8(5): 5132-40. https://doi.org/10.1021/nn5011914.
S. D. Perrault W. M. Shih 2014Virus-inspired membrane encapsulation of DNA nanostructures to achieve in vivo stabilityACS Nano855132514010.1021/nn5011914
Punter, M. T., A. Hernández-García, D. J. Kraft, R. de Vries y P. van der Schoot. (2016). Self-assembly dynamics of linear virus-like particles: theory and experiment. J Phys Chem B, 120(26): 6286-97. https://doi.org/10.1021/acs.jpcb.6b02680.
M. T. Punter A. Hernández-García D. J. Kraft R. de Vries P. van der Schoot 2016Self-assembly dynamics of linear virus-like particles: theory and experimentJ Phys Chem B120266286629710.1021/acs.jpcb.6b02680
Quijia Quezada, C., C. S. Azevedo, S. Charneau, J. M. Santana, M. Chorilli, M. B. Carneiro e I. M. D. Bastos. (2019). Advances in nanocarriers as drug delivery systems in Chagas disease. Int J Nanomedicine, 14: 6407-6424. https://doi.org/10.2147/ijn.S206109.
C. Quijia Quezada C. S. Azevedo S. Charneau J. M. Santana M. Chorilli M. B. Carneiro I. M. D. Bastos 2019Advances in nanocarriers as drug delivery systems in Chagas diseaseInt J Nanomedicine146407642410.2147/ijn.S206109
Romero, E. L. y M. J. Morilla. (2010). Nanotechnological approaches against Chagas disease. Adv Drug Deliv Rev, 62(4-5): 576-88. https://doi.org/10.1016/j.addr.2009.11.025.
E. L. Romero M. J. Morilla 2010Nanotechnological approaches against Chagas diseaseAdv Drug Deliv Rev624-557658810.1016/j.addr.2009.11.025
San Francisco, Juan, Iván Barría, Bessy Gutiérrez, Iván Neira, Christian Muñoz, Hernán Sagua, Jorge E. Araya, Juan Carlos Andrade, Aníbal Zailberger, Alejandro Catalán, Francisco Remonsellez, José Luis Vega y Jorge González. (2017). Decreased cruzipain and gp85/trans-sialidase family protein expression contributes to loss of Trypanosoma cruzi trypomastigote virulence. Microbes Infect, 19(1): 55-61. https://doi.org/10.1016/j.micinf.2016.08.003.
Juan San Francisco Iván Barría Bessy Gutiérrez Iván Neira Christian Muñoz Hernán Sagua Jorge E. Araya Juan Carlos Andrade Aníbal Zailberger Alejandro Catalán Francisco Remonsellez José Luis Vega Jorge González 2017Decreased cruzipain and gp85/trans-sialidase family protein expression contributes to loss of Trypanosoma cruzi trypomastigote virulenceMicrobes Infect191556110.1016/j.micinf.2016.08.003
Terasaka, N., Y. Azuma yD. Hilvert . (2018). Laboratory evolution of virus-like nucleocapsids from nonviral protein cages. Proc Natl Acad Sci USA, 115(21): 5432-5437. https://doi.org/10.1073/pnas.1800527115.
N. Terasaka Y. Azuma D. Hilvert 2018Laboratory evolution of virus-like nucleocapsids from nonviral protein cagesProc Natl Acad Sci USA115215432543710.1073/pnas.1800527115
Walls, A. C., B. Fiala, A. Schäfer, S. Wrenn, M. N. Pham, M. Murphy, L. V. Tse, L. Shehata, M. A. O’Connor, C. Chen, M. J. Navarro, M. C. Miranda, D. Pettie, R. Ravichandran, J. C. Kraft, C. Ogohara, A. Palser, S. Chalk, E. C. Lee, K. Guerriero, E. Kepl, C. M. Chow, C. Sydeman, E. A. Hodge, B. Brown, J. T. Fuller, K. H. Dinnon, 3rd, L. E. Gralinski, S. R. Leist, K. L. Gully, T. B. Lewis, M. Guttman, H. Y. Chu, K. K. Lee, D. H. Fuller, R. S. Baric, P. Kellam, L. Carter, M. Pepper, T. P. Sheahan, D. Veesler y N. P. King. (2020). Elicitation of potent neutralizing antibody responses by designed protein nanoparticle vaccines for SARS-CoV-2. Cell, 183(5): 1367-1382.e17. https://doi.org/10.1016/j.cell.2020.10.043.
A. C. Walls B. Fiala A. Schäfer S. Wrenn M. N. Pham M. Murphy L. V. Tse L. Shehata M. A. O’Connor C. Chen M. J. Navarro M. C. Miranda D. Pettie R. Ravichandran J. C. Kraft C. Ogohara A. Palser S. Chalk E. C. Lee K. Guerriero E. Kepl C. M. Chow C. Sydeman E. A. Hodge B. Brown J. T. Fuller K. H. Dinnon, 3rd L. E. Gralinski S. R. Leist K. L. Gully T. B. Lewis M. Guttman H. Y. Chu K. K. Lee D. H. Fuller R. S. Baric P. Kellam L. Carter M. Pepper T. P. Sheahan D. Veesler N. P. King 2020Elicitation of potent neutralizing antibody responses by designed protein nanoparticle vaccines for SARS-CoV-2Cell183513671382e1710.1016/j.cell.2020.10.043
WHO. (2024). Enfermedad de Chagas (tripanosomiasis americana). https://www.who.int/es/news-room/fact-sheets/detail/chagas-disease-(american-trypanosomiasis).
WHO 2024Enfermedad de Chagas (tripanosomiasis americana)https://www.who.int/es/news-room/fact-sheets/detail/chagas-disease-(american-trypanosomiasis)
Yang, Y., Y. Hong, G. H. Nam, J. H. Chung, E. Koh e I. S. Kim. (2017). Virus-mimetic fusogenic exosomes for direct delivery of integral membrane proteins to target cell membranes. Adv Mater, 29(13). https://doi.org/10.1002/adma.201605604.
Y. Yang Y. Hong G. H. Nam J. H. Chung E. Koh I. S. Kim 2017Virus-mimetic fusogenic exosomes for direct delivery of integral membrane proteins to target cell membranesAdv Mater291310.1002/adma.201605604
Zhang, P., Y. Chen, Y. Zeng, C. Shen, R. Li, Z. Guo, S. Li, Q. Zheng, C. Chu, Z. Wang, Z. Zheng, R. Tian, S. Ge, X. Zhang, N. S. Xia, G. Liu y X. Chen. (2015). Virus-mimetic nanovesicles as a versatile antigen-delivery system. Proc Natl Acad Sci USA, 112(45): E6129-38. https://doi.org/10.1073/pnas.1505799112.
P. Zhang Y. Chen Y. Zeng C. Shen R. Li Z. Guo S. Li Q. Zheng C. Chu Z. Wang Z. Zheng R. Tian S. Ge X. Zhang N. S. Xia G. Liu X. Chen 2015Virus-mimetic nanovesicles as a versatile antigen-delivery systemProc Natl Acad Sci USA11245E6129E613810.1073/pnas.1505799112
Zhao, Xiu, Yiyang Wang, Wenxiao Jiang, Qiongwei Wang, Jun Li, Zhiyang Wen, Airong Li, Kaixiang Zhang, Zhenzhong Zhang, Jinjin Shi y Junjie Liu. (2022). Herpesvirus-mimicking DNAzyme-loaded nanoparticles as a mitochondrial DNA stress inducer to activate innate immunity for tumor therapy. Adv Mater, 34(37): 2204585. https://doi.org/10.1002/adma.202204585.
Xiu Zhao Yiyang Wang Wenxiao Jiang Qiongwei Wang Jun Li Zhiyang Wen Airong Li Kaixiang Zhang Zhenzhong Zhang Jinjin Shi Junjie Liu 2022Herpesvirus-mimicking DNAzyme-loaded nanoparticles as a mitochondrial DNA stress inducer to activate innate immunity for tumor therapyAdv Mater3437220458510.1002/adma.202204585
Zhuang, R., M. Chen, Y. Zhou, W. Cheng, T. Zhang, Y. Ni, C. Guo, J. Tu y L. Jiang. (2021). Virus-mimicking liposomal system based on dendritic lipopeptides for efficient prevention ischemia/reperfusion injury in the mouse liver. ACS Macro Lett, 10(2): 215-222. https://doi.org/10.1021/acsmacrolett.0c00743.
R. Zhuang M. Chen Y. Zhou W. Cheng T. Zhang Y. Ni C. Guo J. Tu L. Jiang 2021Virus-mimicking liposomal system based on dendritic lipopeptides for efficient prevention ischemia/reperfusion injury in the mouse liverACS Macro Lett10221522210.1021/acsmacrolett.0c00743
Zingales, B., M. A. Miles, D. A. Campbell, M. Tibayrenc, A. M. Macedo, M. M. Teixeira, A. G. Schijman, M. S. Llewellyn, E. Lages-Silva, C. R. Machado, S. G. Andrade y N. R. Sturm. (2012). The revised Trypanosoma cruzi subspecific nomenclature: rationale, epidemiological relevance and research applications. Infect Genet Evol, 12(2): 240-53. https://doi.org/10.1016/j.meegid.2011.12.009.
B. Zingales M. A. Miles D. A. Campbell M. Tibayrenc A. M. Macedo M. M. Teixeira A. G. Schijman M. S. Llewellyn E. Lages-Silva C. R. Machado S. G. Andrade N. R. Sturm 2012The revised Trypanosoma cruzi subspecific nomenclature: rationale, epidemiological relevance and research applicationsInfect Genet Evol12224025310.1016/j.meegid.2011.12.009
Contribución de autorías:
Cárdenas-Guerra R. E. y Hernández-García A.: Concepción y diseño del artículo.
Cárdenas-Guerra R. E., Moreno-Gutiérrez D. S. y Hernández-García A.: Revisión y edición final del texto.